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微流控-磁學(xué)檢測(cè)腫瘤外泌體研究取得進(jìn)展

摘要

腫瘤來(lái)源的循環(huán)外泌體 TDE) 正在被作為信息和非侵入性生物標(biāo)志物。然而,定量檢測(cè)TDE仍然具有挑戰(zhàn)性。在此,我們構(gòu)建了DNA四面體結(jié)構(gòu)探針(TSP)介導(dǎo)的微流控磁檢測(cè)系統(tǒng)(μFMS),為分析TDEs提供了一個(gè)快速、靈敏的平臺(tái)。構(gòu)建CD63適配體修飾的Fe3O4磁性納米顆粒(MNPs)形成磁性納米報(bào)告探針(MNRs)。微流控芯片由DNA TSP修飾的醛基功能化的玻璃和蛇形微通道設(shè)計(jì)的PDMS層制成。模擬血清與PBS在TDE檢測(cè)方面無(wú)顯著差異,表明了所構(gòu)建的μFMS系統(tǒng)在復(fù)雜生物系統(tǒng)中進(jìn)行TDE分析的可行性。在成本、反應(yīng)時(shí)間和操作程序方面,該μFMS有潛力被開(kāi)發(fā)為癌癥診斷和治療的臨床即時(shí)檢測(cè)工具。

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介紹

癌癥目前人類(lèi)的主要死因,嚴(yán)重危害人類(lèi)健康。外泌體是大多數(shù)癌細(xì)胞分泌的杯狀脂質(zhì)雙層膜囊泡(直徑 30-150 nm),含有生物活性脂質(zhì)、核酸和蛋白質(zhì)貨物。腫瘤來(lái)源的循環(huán)外泌體 (TDE) 通過(guò)癌細(xì)胞膜的向外膨脹釋放,并且可以通過(guò)傳遞不同的信號(hào)分子來(lái)介導(dǎo)細(xì)胞間通訊,參與癌癥中的各種生理和病理過(guò)程。越來(lái)越多的研究表明,組織和血清中有許多 TDE 可以被識(shí)別為早期診斷的癌癥生物標(biāo)志物。在 TDEs5 表面發(fā)現(xiàn)了多種膜蛋白,例如膜運(yùn)輸?shù)鞍祝≧abs、膜聯(lián)蛋白)、熱休克蛋白(Hsp 90、Hsp 70、Hsp60 和 Hsc70)和四跨膜蛋白(CD82、CD9、CD63、CD81)。其中,CD9 和 CD63 等四跨膜蛋白已被用作鑒定和分析 TDEs 的外泌體特異性標(biāo)記物。

迄今為止,通過(guò)識(shí)別和結(jié)合外泌體表面的四跨膜蛋白,已經(jīng)開(kāi)發(fā)了許多 TDE 檢測(cè)方法,包括熒光 、比色法ELISA、表面等離子體共振 (SPR)、表面增強(qiáng)拉曼散射 (SERS) 和電化學(xué)。然而,由于檢測(cè)性能相對(duì)較低、操作復(fù)雜、成本高等缺點(diǎn),這些方法尚未在臨床上得到應(yīng)用。因此,開(kāi)發(fā)一個(gè)靈敏、快速、自動(dòng)化的TDE分析檢測(cè)平臺(tái)至關(guān)重要。、

最近,磁性生物傳感器已成為強(qiáng)大的分子分析診斷平臺(tái),可測(cè)量包括 DNA、可溶性蛋白質(zhì)、外泌體和細(xì)胞在內(nèi)的靶標(biāo),具有固有的低背景噪聲和生物介質(zhì)中穩(wěn)定的信號(hào)等優(yōu)勢(shì)。一般來(lái)說(shuō),磁性納米材料(MNPs)、標(biāo)記策略和磁力計(jì)是用于分子分析的磁性生物傳感器的關(guān)鍵因素。MNP,包括鐵氧體 MNP、鐵芯 MNP 和多核 MNP,由于其獨(dú)特的磁性和易于表面改性的特點(diǎn),是傳感應(yīng)用的有吸引力的材料。其中,鐵氧體MNPs因其高M(jìn)sat(飽和磁化強(qiáng)度)值、低毒性等特點(diǎn),在磁性生物傳感器中得到更廣泛的應(yīng)用。粒徑是影響磁性生物傳感器檢測(cè)性能的因素之一,流體動(dòng)力學(xué)直徑小于 50 nm 的 MNP 已被證明是理想的尺寸。磁性生物傳感器的常見(jiàn)標(biāo)記策略包括聚類(lèi)測(cè)定、夾心測(cè)定和直接標(biāo)記。夾心磁標(biāo)記是使用親和配體功能化MNP捕獲生物靶標(biāo)的最廣泛使用的方法之一。親和配體與固定在固體基板表面的二級(jí)親和配體偶聯(lián),將MNP帶到傳感器表面進(jìn)行磁信號(hào)檢測(cè)。親和配體(如適配體)可以識(shí)別具有高親和力和特異性的靶標(biāo),已越來(lái)越多地用于與MNPs的偶聯(lián)。 各種類(lèi)型的磁力計(jì)已被應(yīng)用于測(cè)量用親和配體功能化MNP標(biāo)記的生物靶標(biāo)產(chǎn)生的磁信號(hào),包括磁通門(mén)傳感器、超導(dǎo)量子干涉器件(SQUIDs)、光泵浦原子磁力計(jì)(OPM)、 磁阻 (MR) 傳感器、霍爾效應(yīng)磁力計(jì)和感應(yīng)線圈 。SQUID和OPM傳感器具有很高的檢測(cè)靈敏度,但它們?cè)谛⌒突徒档统杀痉矫娴臐摿τ邢蕖4磐ㄩT(mén)傳感器、磁阻傳感器和霍爾傳感器已用于 POCT 檢測(cè),但它們的檢測(cè)靈敏度有限。基于感應(yīng)線圈的磁性探測(cè)器具有易于小型化、集成化和低成本的優(yōu)點(diǎn)。將感應(yīng)線圈與差分電路相結(jié)合,可以大大降低噪聲,提高磁探測(cè)器的靈敏度。例如,由感應(yīng)線圈和差分電路組成的磁性傳感器陣列能夠以高靈敏度對(duì)磁性納米粒子進(jìn)行空間成像。

微流控芯片可以將實(shí)驗(yàn)室集成到單個(gè)芯片中,以實(shí)現(xiàn)快速和自動(dòng)檢測(cè),通過(guò)提供高通量和靈敏度與低試劑消耗的有吸引力的組合,使檢測(cè)和分析 TDE 成為可能。用于TDE檢測(cè)的微流控芯片通常由上蓋和底層基板組成。為了提高捕獲效率,微觀結(jié)構(gòu)通常設(shè)計(jì)在上層通道中,以提供較大的表面積。下層通常用作固定親和配體的固體底物,例如抗體和適配體。

近年來(lái),自組裝DNA納米技術(shù)因其非凡的生物穩(wěn)定性和生物相容性而備受關(guān)注。三維 DNA TSP 已被引入用于檢測(cè) DNA、microRNA、CTC 和 TDEs40。DNA TSPs通過(guò)共價(jià)結(jié)合,可以很容易地固定在固體底物上,具有優(yōu)異的可控性和高精度的取向,可以減少非特異性吸附,調(diào)節(jié)抗體和適配體等親和配體的分布和取向,從而提高檢測(cè)靈敏度。

在這項(xiàng)工作中,我們開(kāi)發(fā)了一種微流控磁檢測(cè)系統(tǒng)(μFMS),通過(guò)將MNP、微流控芯片和基于感應(yīng)線圈的磁探測(cè)器與DNA TSPs相結(jié)合,用于快速靈敏地檢測(cè)TDE。CD適配體修飾的 MNP 可以將捕獲 TDE 的事件轉(zhuǎn)換為磁信號(hào),并以電壓信號(hào)的形式輸出。采用帶有差分放大電路的感應(yīng)線圈來(lái)消除大部分背景噪聲。DNA TSP被引入并固定在醛修飾的載玻片上(圖S3),作為支架形成TDEs的捕獲結(jié)構(gòu)。帶有蛇形微通道的PDMS上層與載玻片緊密結(jié)合,并與磁性檢測(cè)裝置集成。對(duì)μFMS進(jìn)行了研究和優(yōu)化,以自動(dòng)、靈敏和快速分析從U2細(xì)胞系中提取的TDE。

結(jié)果與討論

μFMS的工作原理

μFMS通過(guò)三明治樣免疫測(cè)定法檢測(cè)TDE。DNA TSP通過(guò)胺和醛基之間的共價(jià)偶聯(lián)固定在醛官能化載玻片上(圖1a)。將SA和生物素-抗CD9依次注射到微通道中,形成DNA TSPs/SA/生物素-抗CD9結(jié)構(gòu)。TDE和MNR溶液通過(guò)入口泵入微流控芯片。在流經(jīng)蛇形混合微通道時(shí),兩種溶液混合并發(fā)生反應(yīng)。然后,DNA TSPs/SA/生物素-抗CD9捕獲結(jié)構(gòu)、TDEs和MNRs之間形成夾層結(jié)構(gòu)(圖1b)。之后,使用PBS沖洗MNR,然后將其收集到Eppendorf管中。由于我們使用的磁傳感平臺(tái)比在芯片上更能測(cè)量 MNR 產(chǎn)生的基于體積的磁信號(hào),因此我們使用磁力計(jì)磁探測(cè)器測(cè)量了總 MNR(Voltage total MNRs)和沖洗后的 MNR(沖洗后的電壓 MNR)的電壓輸出信號(hào)。通過(guò)計(jì)算總電壓MNRs和沖洗后的電壓MNRs之間的差值,獲得了片上捕獲的TDEs(片上電壓MNR)的電壓輸出信號(hào)。

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提取的 TDE 的表征

透射電鏡觀察從U251細(xì)胞系中提取的TDEs的形態(tài)。結(jié)果表明,TDEs具有典型的杯形膜結(jié)構(gòu),平均尺寸為100 ~ 150 nm(圖2a),這與之前的報(bào)道一致。DLS結(jié)果表明,TDEs的平均尺寸在131 nm的峰值處(圖2b),證實(shí)了我們制備的樣品中存在TDE。WB 顯示了 CD63 和 CD9 標(biāo)記蛋白的透明條帶(圖 2c),這表明 CD63 和 CD9 在 TDE 表面表達(dá)。NTA分析的TDEs大小分布和濃度顯示,從U251細(xì)胞系中提取的TDEs濃度為1.98×1011顆粒/mL,平均大小為131 nm(圖2d),這與DLS結(jié)果一致,證實(shí)了我們制備的樣品中存在TDEs,可用于進(jìn)一步研究。

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DNA TSP 和 MNR 的表征和優(yōu)化

進(jìn)行SDS?PAGE分析,以證明通過(guò)PCR進(jìn)行的DNA四面體。如圖3a(左)所示,與2個(gè)單鏈DNA(A,B)、2個(gè)雙鏈DNA(AB,CD)、2個(gè)三鏈DNA(ABC、BCD)、1個(gè)四鏈DNA(ABCD)和1個(gè)五鏈DNA(ABCDL)的圖像相比,凝膠電泳圖像表明DNA TSPs移動(dòng)速度更慢,證實(shí)了DNA TSPs的成功形成。通過(guò)AFM的DNA TSPs的表面形態(tài)如圖3a(右)所示。AFM圖像中的三角形表明DNA TSPs組裝成功。

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TEM證實(shí)了MNRs和TDEs相結(jié)合的可行性。如圖3b所示,在MNRs表面觀察到具有典型磷脂雙層膜結(jié)構(gòu)的TDEs(用紅色箭頭表示),表明MNRs成功捕獲了TDE。

適配體與MNPs的結(jié)合取決于MNPs上的羧基與CD63適配體的氨基之間的脫水縮合。透射電鏡(TEM)、傅里葉變換紅外光譜(FTIR)光譜和DLS觀察結(jié)果證實(shí)了MNPs與CD63適配體之間的偶聯(lián)。如圖3c(a)所示,在MNPs的FTIR光譜中觀察到580 cm?1 (Fe-O)和1642 cm?1 (C = O)處的兩個(gè)峰(黑色)。與CD63適配體孵育后,在MNRs(黑色)的FTIR光譜中清晰地觀察到1378 cm?1 (C-N)、1538 cm?1 (N-H)、2850 cm?1和2920 cm?1(烷基鏈中的CH2)處的另外四個(gè)峰。如圖3c(b)所示,DLS揭示的MNPs和MNRs之間的尺寸變化表明,MNRs的直徑(276.9 nm)大于單分散MNPs(52.5 nm)。透射電鏡顯示,圖3c(c)中的MNRs發(fā)生了輕微的聚集,而圖3c(d)中的MNPs表現(xiàn)出良好的單一色散性。以上結(jié)果表明,MNP表面可以與CD63適配體成功偶聯(lián)。

μFMS的構(gòu)建和TDE檢測(cè)實(shí)驗(yàn)條件的優(yōu)化

微流控芯片的目的是固定TSP和捕獲TDE。PDMS蛇形結(jié)構(gòu)的尺寸為500 μm寬和120 μm深(圖S1),與直線結(jié)構(gòu)(扁平芯片)相比,提供了更大的表面積(圖S2),可以提高TDE的捕獲效率。此外,氨基修飾的DNA TSPs通過(guò)胺和醛基之間的共價(jià)偶聯(lián)很容易固定在醛官能化載玻片上。

μFMS的性能通過(guò)磁性納米顆粒溶液的濃度梯度進(jìn)行校準(zhǔn)(圖S5)。結(jié)果表明,產(chǎn)生的電壓信號(hào)與標(biāo)準(zhǔn)磁性納米粒子的濃度具有良好的線性相關(guān)性,線性回歸方程表示為Y = 0.2091X + 0.00283 (R2 = 0.9997),證明所構(gòu)建的μFMS系統(tǒng)能夠定量檢測(cè)MNR捕獲的TDE。

使用DNA TSP修飾的蛇形芯片和扁平芯片證實(shí)了μFMS中蛇形芯片對(duì)TDE檢測(cè)的有效性。蛇形芯片組的電壓信號(hào)高于扁平芯片組,這意味著芯片上捕獲的TDE更多(圖S6A)。

使用醛修飾的載玻片基板制成的微流控芯片驗(yàn)證了基于DNA TSP的支架對(duì)TDE檢測(cè)的有效性,該芯片由雙鏈DNA(dsDNA)和TSP DNA固定的醛修飾載玻片基板組成。結(jié)果表明,DNA TSP組比dsDNA組具有更高的電壓信號(hào),表明DNA TSPs具有更高的捕獲效率(圖S6B)。

TDE和MNR之間的孵育時(shí)間會(huì)影響分析過(guò)程。較短的孵育時(shí)間會(huì)導(dǎo)致 TDE 無(wú)法完全與 MNR 結(jié)合。較長(zhǎng)的孵育時(shí)間可能會(huì)加重適配體對(duì)MNPs的非特異性吸收。μFMS中的流速會(huì)影響TDEs和MNRs之間的結(jié)合效率,低流速會(huì)增加樣品處理時(shí)間;然而,高流速會(huì)導(dǎo)致 TDE 和 MNR 之間的孵育不足。為了通過(guò)μFMS獲得更高的TDEs檢測(cè)性能,優(yōu)化了孵育時(shí)間和流速。

如圖4a所示,當(dāng)TDE和MNR之間的孵育時(shí)間為10、30、60、90和120 min時(shí),60 min可以達(dá)到最高的SNR(信噪比),這意味著微流控芯片上的TDE捕獲效率最高。因此,選擇60 min作為最佳孵育時(shí)間。

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如圖4b所示,在最佳孵育時(shí)間(60 min)下,隨著流速的增加,信噪比信號(hào)增大,達(dá)到最高值并開(kāi)始減小。在 20 μL/min 的流速下實(shí)現(xiàn)的最高 SNR 意味著可以獲得 TDE 的最高捕獲效率。因此,選擇20 μL/min作為最佳流速。

設(shè)計(jì)梯度實(shí)驗(yàn)來(lái)優(yōu)化結(jié)合在MNPs上的CD63適配體濃度。如圖4c所示,當(dāng)CD63適配體濃度從0.05 μM增加到3 μM時(shí),CD63-FAM-MNPs的熒光強(qiáng)度逐漸增加,并在濃度為3 μM時(shí)變得穩(wěn)定,這表明負(fù)載在MNPs表面的CD63適配體濃度已達(dá)到飽和。因此,選擇3 μM作為本實(shí)驗(yàn)的最佳適配體濃度。

用于TDE的μFMS的分析性能

優(yōu)化用于TDE檢測(cè)的μFMS的實(shí)驗(yàn)條件后,在微流控芯片上分析從PBS溶液中不同濃度的U251細(xì)胞系中分離得到的TDE。隨著TDE濃度從1.98 × 103增加到1.98 × 107 particles/mL,MNRs的信噪比也隨之增加(圖5a)。MNRs的信噪比與TDEs濃度對(duì)數(shù)之間的曲線擬合顯示出良好的線性關(guān)系(圖5b)。相關(guān)方程表示為SNR = 0.11219lg[TDE]-0.03004 (R2 = 0.9965)。由于濃度為 1.98 × 103 個(gè)顆粒/mL 時(shí)的 SNR 明顯低于閾值,即空白信號(hào)加上三個(gè)標(biāo)準(zhǔn)偏差 (3 SD),因此獲得了 1.98 × 103 個(gè)顆粒/mL 的檢測(cè)限 (LOD)(圖 5b,插圖)。

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我們的μFMS方法和其他報(bào)道的用于TDE檢測(cè)的微流控平臺(tái)如表1所示。與大多數(shù)其他工作相比,我們的μFMS具有易于小型化、集成化和低成本等優(yōu)點(diǎn),可以滿足臨床POCT的要求。此外,MNPs、DNA TSPs和微流控芯片與磁性生物傳感器的結(jié)合,確保了該方法能夠?qū)崿F(xiàn)靈敏和快速的檢測(cè)能力。檢測(cè)復(fù)雜生物樣品中的外泌體

為了驗(yàn)證μFMS對(duì)TDEs的臨床實(shí)用性,我們通過(guò)模擬臨床血清樣本評(píng)估了μFMS的檢測(cè)性能。從PBS溶液中U251細(xì)胞系中提取的TDEs與50%FBS和80%FBS模擬血清樣品的SNR沒(méi)有差異(圖6),這意味著我們構(gòu)建的μFMS可能是從真實(shí)臨床樣本中檢測(cè)TDEs的潛在分析方法。

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回收率還用于評(píng)估制備的μFMS用于臨床樣本的可行性。所得結(jié)果分別為100%、106.83%和111.38%,表明我們的μFMS在復(fù)雜環(huán)境下對(duì)TDEs的檢測(cè)性能良好。

結(jié)論

在這項(xiàng)工作中,我們開(kāi)發(fā)了一種 DNA 四面體介導(dǎo)的 μFMS,用于具有高靈敏度和特異性的 TDE 片上檢測(cè)。我們?cè)O(shè)計(jì)并制造了一種以PDMS為上層,玻璃基板為下層的微流控芯片。在玻璃襯底上合成和修飾DNA四面體納米探針以捕獲TDE。將微流控芯片與包含感應(yīng)線圈的磁探測(cè)器和差分放大電路相結(jié)合。在驗(yàn)證了DNA四面體納米探針和微流控芯片在μFM中測(cè)量TDEs的可行性后,確定了μFMS在優(yōu)化條件下的檢測(cè)性能,線性動(dòng)態(tài)檢測(cè)范圍為1.98×103–1.98×107顆粒/mL,檢測(cè)限為1.98×103顆粒/mL。我們證明模擬血清系統(tǒng)和PBS緩沖液對(duì)TDEs的檢測(cè)結(jié)果沒(méi)有顯著差異。與其他TDE檢測(cè)策略相比,我們的μFMS在檢測(cè)靈敏度和時(shí)間方面表現(xiàn)出很大的優(yōu)勢(shì)。因此,我們開(kāi)發(fā)的μFMS系統(tǒng)可以為無(wú)創(chuàng)液體活檢提供非凡的選擇,并有可能成為有用的POCT工具。

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標(biāo)簽:   微流控芯片
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